样品混合：将 2 μL 的 3×甲酰胺凝胶上样缓冲液与 4 μL 的核酸样品混合。

磁珠法质粒小量抽提试剂盒是一种基于磁性纳米技术的核酸纯化工具，结合了经典的SDS碱裂解法和磁珠吸附技术，能够从大肠杆菌中快速、高效地提取高质量的质粒DNA。工作原理该试剂盒利用磁珠表面修饰的官能团，在高盐条件下特异性吸附质粒DNA，而杂质如蛋白质、盐离子等则通过洗涤液被去除。当条件改变时，质粒DNA从磁珠表面洗脱下来，从而实现快速分离和纯化。产品特点高效提取：从2 mL过夜培养的菌液（OD600 = 2.0）中可获得超过15 μg的高拷贝质粒DNA。操作简便：无需多次离心，整个提取过程可在1小时内完成，适合高通量操作。纯度高：提取的质粒纯度高，OD260/OD280比值一般为1.8-1.9，OD260/OD230比值大于2.0，可直接用于下游实验。自动化兼容：可与自动化核酸提取仪配合使用，实现完全自动化操作。 应用场景提取的质粒DNA可用于多种下游应用，包括酶切、测序、文库筛选、连接和转化等分子生物学实验。使用方法菌液处理：取适量菌液离心，弃上清后用裂解液悬浮细菌沉淀。裂解与吸附：加入裂解液和中和液，裂解细胞后加入磁珠，吸附质粒DNA。

它不仅简化了实验流程，更提升了实验结果的质量，是分子生物学实验室不可或缺的精准检测利器。

TAFE凝胶电泳缓冲液(10×)是一种专为核酸电泳设计的高浓度缓冲液，广泛应用于琼脂糖凝胶电泳实验中。它主要由Tris、乙酸和EDTA组成，能够为核酸电泳提供稳定的pH环境和良好的导电性。产品特性成分：主要由200 mM Tris-乙酸和5 mM EDTA组成。工作液浓度：稀释10倍后得到的1×TAFE工作液含有20 mM Tris-乙酸和0.5 mM EDTA，pH值约为8.2。高效分离：适用于分离小于1 kb的DNA片段，能够提供清晰的条带。缓冲能力强：在长时间电泳中，能够维持稳定的pH值，不易出现pH波动。保存条件：室温保存，有效期长达12个月。使用方法稀释：将10×TAFE缓冲液用蒸馏水或去离子水稀释10倍，制备1×工作液。电泳操作：将稀释后的1×TAFE缓冲液加入电泳槽中，确保缓冲液完全覆盖凝胶。加样后开始电泳，电泳条件根据实验需求调整。染色与观察：电泳结束后，使用合适的核酸染料（如EB或Goldview）染色。在紫外灯下观察核酸条带。注意事项沉淀处理：如果出现沉淀，可置于37℃水浴中使其溶解，不影响使用。

SYBR多次冻融实验中表现出良好的稳定性，即使经过20次冻融，其扩增性能与对照组相比无显著差异

在分子生物学实验中，长片段DNA的扩增一直是PCR技术的重要挑战。Ultra-Long Master Mix (2×) (With Dye)凭借其卓越的长片段扩增能力和预混染料的便捷性，成为了这一领域的理想选择。 Ultra-Long Master Mix (2×) (With Dye)是一种专为长片段DNA扩增设计的预混反应体系，其核心成分为Ultra-Long DNA Polymerase。这种聚合酶融合了多种酶的特性，能够在单次反应中高效扩增长达40 kb甚至更长的DNA片段。这种能力使其在基因组学研究、全基因合成以及复杂基因组区域的分析中具有无可比拟的优势。 与无染料版本不同，Ultra-Long Master Mix (2×) (With Dye)在配方中加入了预混染料。这种设计使得实验人员在完成PCR反应后可以直接进行凝胶电泳分析，无需额外添加上样缓冲液。预混染料不仅节省了操作步骤，还减少了因手动添加缓冲液而导致的误差，提高了实验的重复性和可靠性。此外，染料的加入也便于实验人员在电泳过程中实时观察扩增产物的迁移情况，从而更直观地评估PCR反应的效果。

高灵敏度：对核酸的迁移影响小，信噪比高，荧光信号强，背景信号低。

等温扩增变色检测试剂盒是一种基于环介导等温扩增（LAMP）技术的核酸检测工具，能够在恒定温度下快速扩增目标DNA，并通过颜色变化直观地判断检测结果。这种技术无需复杂的温度循环设备，操作简便，适合快速检测病原体和微生物污染。 产品特性 高灵敏度：灵敏度比传统PCR方法高2-5个数量级，检测下限可达20-200 copies/μL。 快速检测：仅需1小时即可完成反应，适合快速诊断。 可视化结果：无需电泳，通过颜色变化（如紫罗兰或蓝紫色变为天蓝色或深天蓝色）即可判断结果。 防污染设计：采用dU掺入和热敏型UDG酶技术，有效防止扩增产物污染。 应用场景 该试剂盒广泛应用于检测生物样品中的病原体、微生物污染等。例如，碧云天的BeyoColor™等温扩增变色检测试剂盒可用于检测特定病原体的感染。此外，一些试剂盒还专门用于检测支原体污染，如BeyoColor™支原体等温扩增变色检测试剂盒。 使用方法 配制反应体系：将LAMP Master Mix、引物、模板DNA、Bst DNA Polymerase等组分混合。 反应条件：在61-65℃下孵育30-60分钟。

对于小于500 bp的DNA片段，检测信号可能较弱，建议使用其他染料如SYBR Green I。

在分子生物学实验中，DNA凝胶电泳是一种常用的技术，用于分离和分析DNA片段。而6×DNA Loading Buffer则是这一实验中不可或缺的重要试剂。 6×DNA Loading Buffer是一种六倍浓缩的上样缓冲液，主要用于DNA凝胶电泳。它含有甘油、EDTA、溴酚蓝和二甲苯青FF等成分。其中，甘油可以增加样品的密度，使样品沉入凝胶加样孔中，防止样品漂浮；EDTA则用于螯合金属离子，防止DNA降解。溴酚蓝和二甲苯青FF作为指示剂，分别指示电泳的进程，帮助实验者判断电泳是否达到最佳分离效果。 使用6×DNA Loading Buffer时，通常按照1:5（Loading Buffer:DNA样品）的比例混合。例如，对于5μL的DNA样品，加入1μL的6×Loading Buffer，混匀后即可加样。这种缓冲液适用于多种浓度的琼脂糖凝胶，溴酚蓝在0.6%、1%、1.4%和2%琼脂糖凝胶中的迁移率分别与1Kb、0.6Kb、0.2Kb和0.15Kb的双链线性DNA片段大致相同。

Ultra-Long Master Mix (2×) 凭借其卓越的性能和便捷的操作流程，成为扩增选择

3×甲酰胺凝胶上样缓冲液是一种专门用于核酸电泳的辅助试剂，特别适用于RNA样品的变性电泳。它能够帮助核酸样品在琼脂糖凝胶电泳中更好地沉入加样孔，并通过示踪染料观察电泳进程。组成成分该缓冲液的主要成分包括：90% 甲酰胺（Formamide）：用于变性核酸，使其保持单链状态。0.075% 二甲苯青（Xylene Cyanol FF） 和 0.075% 溴酚蓝（Bromophenol Blue）：作为示踪染料，用于观察电泳的进程。30 mM EDTA：螯合二价金属离子，防止核酸在电泳过程中被降解。使用方法样品混合：将 2 μL 的 3×甲酰胺凝胶上样缓冲液与 4 μL 的核酸样品混合。变性处理：将混合后的样品在 70℃加热变性 5-15 分钟，然后立即置于冰上冷却，以防止核酸复性。电泳上样：将处理后的样品加入琼脂糖凝胶的加样孔中，进行电泳。应用场景3×甲酰胺凝胶上样缓冲液主要用于RNA样品的变性电泳，适用于甲醛变性或非变性的琼脂糖凝胶电泳以及聚丙烯酰胺凝胶电泳。它也可用于寡聚单链DNA的聚丙烯酰胺凝胶电泳。

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